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炭疽桿菌(BA)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR 法)

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詳細介紹

炭疽桿菌(BA)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR )

【產品名稱】

將步驟 1 提取的 DNA、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL,分別加入相應的反

應管中,蓋好管蓋,勻,短暫離心。

通用名稱:炭疽桿菌(BA)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR )

Name

Bacillus Anthracis Detection Kit (Real-Time PCR Method)

4  擴增(核酸擴增區)

4.1 將待檢測反應管于熒光定量  PCR  儀反應槽內;

4.2 好通道、樣品信息,反應體系設25μL;

熒光通道選擇:  檢測通道(Reporter DyeFAM, 淬滅通道(Quencher Dye

NONEABI 系列儀器請勿選擇 ROX 比熒光,選擇 None  即可。

【包裝規格】48T/

【預期用途】

炭疽是由炭疽桿菌(Bacillus Anthracis, BA)感染引起的一種人獸共患病。BA

在環境中形成芽孢,可長期、穩定地存在于自然界中。由于 BA  的穩定性及其致

病性,易引發突發公共衛生事件。目前的 BA  檢測方法主要基于病原體的培養、染色

鏡檢、血清學檢測等,但這些方法均適合早期的快速偵檢?;诤怂釞z測的熒光-PCR

技術,因其靈敏度高、操作簡單、特異性好,可快速檢測炭疽病原,及時控制炭疽疫

4.3  推薦循環數設

步驟

循環數

溫度

95

94℃

55

時間

收集熒光信號

1

1 cycle

10min

15sec

30sec

[1]

。

2

40 cycles

本試劑盒適用于檢測皮膚水泡液、咽拭子、可疑食物等樣本中的炭疽桿菌,用于

炭疽桿菌感染的輔助診斷。

5  結果分析判定

6.1結果分析條件設定

【檢驗原

[2-3]

,用熒光 PCR  技術對炭疽

 Baseline Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現

整體傾斜時,根據分析后圖像調節 Baseline start (一般可在 3~15  范圍內調

)、stop (一般可在 5~20 范圍內調節),以及 Threshold Value (上下拖動

閾值線至高于陰性對照),新分析結果。

本試劑對炭疽桿菌特異性基因設計引物和熒光探針

桿菌的核酸進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

【試劑組成】

7結果判斷

核酸提取液

酶液

1.5mL×2  管

50μL×1 管

1.0mL×1 管

50μL×1 管

250μL×1 管

陽性:檢測通道 Ct 值≤35.0,丏曲線有明顯的指數增長曲線。

可疑:檢測通道 Ct >35.0,丏出現明顯擴增曲線的樣本建議復試驗,復試

驗結果出現 Ct 值≤35.0  和明顯擴增曲線者為陽性,否則為陰性。

陰性:樣本檢測結果無 Ct  值丏無明顯的擴增曲線。

BA  反應液

BA  陽性質控品

陰性質控品

8 檢測方法的局限性

注:

1同批號試劑用。

Ø  樣本檢測結果不樣本收集、處、運送以及保存質量有關;

Ø  樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;

Ø  陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;

Ø  病原體在流行過程中基因突變、組,會導致假陰性結果;

Ø  同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;

Ø  試劑運輸,保存當或試劑配制準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定

量檢測準確的結果;

2)試劑盒內各試劑組份足夠包裝規格所標示的檢測次數。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融數超過 5 次,有效期 12  個月。

【適用儀器】

ABI  、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf  等系列

熒光定量 PCR  檢測儀。

Ø  本檢測結果僅供考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

9.  質控標準

【標本采集】

陰性質控品:無明顯擴增曲線或無 Ct  值顯示;

陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,丏 Ct  值≤32;

以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

皮膚炭疽,取水泡液 1mL;肺炭疽,采集咽拭子標本,放入標本采集管中;腸炭

疽,取糞便  1g

【保存和運輸】

上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可-70℃,但能超過 6  個月,標本

運送應采用 2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復凍融。

【注意事項】

Ø  所有操作嚴格按照說明書進行;

Ø 試劑盒內各種組分使用前應自然融化,*并短暫離心;

Ø  反應液應避光保存;

【使用方法】

1.  樣品處(樣本處區)

Ø 反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

Ø  使用一次性吸頭、一次性手套和各區與用工作服;

Ø 樣本處、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;

Ø 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處工作臺和移液器;

Ø  試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通

則》進行處。

 

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